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如何分析定量PCR實驗中的Ct值與Cq 值?

 更新時間:2022-08-01 點擊量:6841
如何分析定量PCR實驗中的Ct值與Cq 值?

在進(jìn)行定量PCR實驗時,實驗數(shù)據(jù)中的C t值是至關(guān)重要的。今天將帶您了解 Ct值在 qPCR 中的關(guān)鍵作用、及其計算方式和分析統(tǒng)計方法。

C t值多重名稱
在我們深入解釋什么是 Ct 值之前,我們想花點時間強(qiáng)調(diào)一下,多年來該值已被賦予多個名稱,包括:
C t – 閾值循環(huán)
C p – 交叉點
TOP——起飛點
C q – 量化周期
這些值都是一樣的,只是名稱不同。為了規(guī)范qPCR的命名法,一般標(biāo)準(zhǔn)實驗中會使用Cq值。


PCR


什么是 C q值?
定量PCR實驗通常用于量化目標(biāo)序列的絕對量或比較樣本之間目標(biāo)序列的相對量。該技術(shù)通過放大過程中發(fā)出的目標(biāo)特異性熒光信號實時監(jiān)測目標(biāo)的擴(kuò)增。
盡管實時熒光定量PCR中, 熒光染料和探針 應(yīng)該是序列特異性的,但在大多數(shù)實時 PCR 實驗中會出現(xiàn)大量的背景熒光。通過閾值線和 C t值可以輕松分析背景中的熒光信號,了解 PCR的循環(huán)周期。其實,所謂的閾值線是檢測水平或反應(yīng)達(dá)到高于背景水平的熒光強(qiáng)度的點。在進(jìn)行 PCR 之前,您(或您的 PCR 儀中的軟件)設(shè)置了一個閾值水平。這實際上是圖表中的一條線,代表高于背景熒光的水平,它也在指數(shù)階段開始時與反應(yīng)曲線相交(圖 1)。
C q值是您的樣品反應(yīng)曲線與閾值線相交處的 PCR 循環(huán)數(shù)。該值表明從您的樣本中檢測到真實信號需要多少個周期。實時 PCR 運行將具有每個樣品的反應(yīng)曲線,因此會有許多 C q 值。您的 PCR 儀軟件會計算 每個樣品的 Cq值并繪制圖表。


qpcr


(實時 PCR 擴(kuò)增曲線上的閾值水平和 C q 值)
C q 值與樣本中目標(biāo)核酸的數(shù)量成反比,并與樣本中的目標(biāo)拷貝數(shù)相關(guān)。較低的 C q值(通常低于 29 個循環(huán))表示大量的目標(biāo)序列。較高的 C q 值(超過 38 個循環(huán))意味著較低的目標(biāo)核酸量。高 C q值也可能表明目標(biāo)或 PCR 設(shè)置存在問題,如本文后面的陷阱部分所述。


您的 PCR 儀器將在每個循環(huán)中收集熒光數(shù)據(jù)。大約 15 個循環(huán)后,您將對背景熒光水平有一個很好的了解 ——這將顯示為一條從零循環(huán)點開始的直線。閾值水平將剛好高于此水平,但在您的樣品開始進(jìn)入 PCR 擴(kuò)增指數(shù)階段時。今天,計算機(jī)軟件可以計算出這個確切的點,所有現(xiàn)代實時循環(huán)儀都有一個自動閾值線設(shè)置。


實時 PCR 記錄反應(yīng)過程中發(fā)出的熒光量,此時所有 PCR 成分都非常豐富。這樣,C q  值通常在實時 PCR 中的重復(fù)之間保持一致。當(dāng)達(dá)到 PCR 反應(yīng)終點時,積累的抑制劑、失活的聚合酶和限制性試劑會在終點值上產(chǎn)生很多變化,這就是傳統(tǒng) PCR 無法定量使用的原因。


影響Cq值的相關(guān)因素有哪些?
許多因素會影響您的 C q 值。 您的樣品之間C q 值的一些差異將是由于生物事件,例如您的目標(biāo)基因響應(yīng)治療而上調(diào)/下調(diào)。然而,C q 值同樣容易受到 PCR 反應(yīng)準(zhǔn)備和 PCR 組分本身的影響。比較常見的是以下幾種情況:
1. 主混音
溶液中的 pH 值和鹽濃度會影響熒光發(fā)射。熒光發(fā)射的任何變化都會自然地改變您的 C q值。因此,請確保您只使用高質(zhì)量的 PCR 組件,如果使用自制溶液,請在每次實驗前檢查 pH 值并監(jiān)測鹽沉淀。
2. 被動參考染料
反應(yīng)值是您的 FAM(報告基因)染料與您的 ROX(被動參考)染料的熒光比率。假設(shè) FAM 熒光不變,較低量的 ROX 會產(chǎn)生較高的反應(yīng)值。
3. 反應(yīng)效率
PCR 反應(yīng)效率取決于預(yù)混液性能、引物的特異性、引物退火溫度和樣品質(zhì)量。一般來說,90% 以上的 PCR 效率是可以接受的。* 的 PCR 效率表明感興趣的目標(biāo)序列在每個循環(huán)中加倍。 PCR 效率與模板 10 倍稀釋之間 3.3 個循環(huán)的變化相吻合。
要確定每個引物對的 PCR 效率,請使用五個 10 倍稀釋步驟對模板進(jìn)行系列稀釋,并計算 R 2 ,這是一種描述一個值預(yù)測另一個值的統(tǒng)計量度。對于接近 100% 的 PCR 效率,您的 R 2 值應(yīng)大于 0.99。
對標(biāo)準(zhǔn)曲線上的每個點至少運行三個重復(fù)。對于低拷貝數(shù)輸入,更高的重復(fù)數(shù)尤其重要,因為重復(fù)數(shù)之間的變化更有可能發(fā)生。



4. 其他問題
假設(shè)您已經(jīng)排除了上述 3 個因素,導(dǎo)致 C q 值晚的常見原因可能是:
模板太少 - 嘗試使用更多模板。
次優(yōu)的核酸分離——考慮您的核酸分離方案,量化您的 DNA,運行瓊脂糖凝膠,嘗試其他方案/ 試劑盒。
cDNA 合成過程中逆轉(zhuǎn)錄酶活性較差——逆轉(zhuǎn)錄酶對降解敏感。訂購一個新的。
RNA/cDNA 降解——保持您的工作空間清潔,改善您的RNA 處理行為 ,避免 cDNA 的多次凍融循環(huán)。
PCR抑制。

另外,其他原因也同樣會影響定量PCR 的Cq值,包括細(xì)胞系/培養(yǎng)物中的感染或污染,但這些問題通常在核酸分離之前被發(fā)現(xiàn)。更多PCR相關(guān)問題可以進(jìn)入蘇州阿爾法生物實驗器材有限公司進(jìn)行咨詢或留言。

 

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